对照组健康人皮肤组织6例取自东直门医院手术室捐献者健康皮肤。所有受试者近2周内未接受外用药治疗，且无心、脑血管，肝、肾及造血系统等严重原发性疾病。所有皮肤组织样本收集后立即放入液氮，冻存备用。
1.2 试剂 Trizol购自美国Invitrogen公司；RNA提取试剂盒（批号：CW0581），反转录cDNA合成试剂盒（批号：CW0744），PCR扩增试剂盒（批号：CW0716A）均购自北京康为世纪公司。
1.3 方法
1.3.1 引物合成 内参基因β-actin以及IL-22R1、JAK1、STAT3、C-myc的引物由上海生工公司合成，引物序列如下：β-actin上游引物5′-TGACGTGGACATCCGCAAAG-3′，下游引物5′-CTGGAAGGTGGACAGCGAGG-3′；IL-22R1上游引物5′-TTTCAGCTTTGCTCTGGTCA-3′，下游引物5′-GGTGGCTTGAGGGTAGTGTG-3′；JAK1上游引物5′-AGTGCCCTGAGCTACTTGGA-3′，下游引物5′-AGGTCAGCCAGCTCCTTACA-3′；STAT3上游引物5′-GGAGGAGGCATTCGGAAG-3′，下游引物5′-ATCTGTGTGACACCAACGA-3′；C-myc上游引物5′-CGTCCTCGGATTCTCTGCTC-3′，下游引物5′-GCTGGTGCATTTTCGGTTGT-3′。
1.3.2 样本RNA提取及浓度纯度测定 加入1 mL Trizol，在液氮下研磨50 mg皮肤组织样本，提取步骤按试剂说明书进行，提取物即总RNA稀释50倍测定其纯度为OD260/OD280的比值（1.8～2.0），测定总RNA浓度为2×OD260。然后以2 μL loading buffer加入8 μL提取物中，进行琼脂糖凝胶进行电泳，以检测样本是否降解。
1.3.3 cDNA合成 将无RNA酶水11 μL、模板2 μL，oligo dT 2 μL加入反应管中，掌上离心机离心后在65 ℃下孵育5 min，在4 ℃下10 min。在向上述反应管中加入5×RT mix 4 μL、Enzyme Mix 1 μL，掌上离心机离心后在37 ℃下孵育40 min，70 ℃保温10 min。然后在-20 ℃中长期保存备用。
1.3.4 PCR反应 在反应管中加入10 μL 2×PCR Mixture、10 μM上下游引物各1 μL、cDNA模板2 μL、无RNA酶水6 μL，配成20 μL反应体系。上机后设置PCR扩增条件为预变性95 ℃ 10 min，（95 ℃15 s，59 ℃ 60 s）×30个循环。取扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳，观察结果并拍照。
1.3.5 图像分析和数据处理 用GelPro3.2图像分析系统对β-actin、IL-22R1、JAK1、STAT3、C-myc的扩增产物进行灰度值分析，计算IL-22R1/β-actin、JAK1/β-actin、STAT3/β-actin、C-myc/β-actin的比值，以此代表IL-22R1、JAK1、STAT3、C-myc的mRNA相对水平。
1.4 统计学方法 采用SPSS 20.0进行统计学分析，计数资料进行卡方检验，计量资料数据以平均值±标准差（ ±s ）表示，单因素方差分析采用One Way ANOVA检验。同时进行数据相关性分析，正态分布数据运用Pearson相关，非正态分布数据运用Spearman相关。
2 结果
2.1 受试者一般情况 入组银屑病患者中男13例（占72.2%），女5例（占27.8%），正常人組男3例（占50%），女3例（占50%），性别分布差异无统计学意义（ P >0.05）。入组银屑病患者最大年龄65岁，最小30岁；正常人年龄最大49岁，最小33岁。其中，血热证组平均年龄（48.50±8.55）岁，血瘀证组平均年龄（48.67±10.73）岁，血燥证组平均年龄（52.00±12.36）岁，正常人组平均年龄（44.50±8.87）岁，各组年龄分布差异无统计学意义（ P >0.05）。入组银屑病患者病程，血热证组平均值为（12.67±8.02）年，血瘀证组平均值为（10.67±7.74）年，血燥证组平均值为（16.33±11.57）年，各组间病程长短差异无统计学意义（ P >0.05）。入组银屑病患者PASI评分，血热证组平均值为（12.30±8.96），血瘀证组平均值为（11.26±5.09），血燥证组平均值为（13.23±9.79），各组间PASI评分差异无统计学意义（ P >0.05）。受试者一般情况均差异无统计学意义，组间存在可比性。
2.2 PCR产物鉴定 对PCR扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳，以DNA标记Marker作为参照，IL-22R1的mRNA扩增片断大小为194bp，JAK1为371bp，STAT3为174bp，C-myc为380bp，β-actin为205bp，与设计相符。见图1。
2.3 IL-22R1、JAK1、STAT3、C-myc的mRNA表达相关性分析 全体受试者IL-22R1与通路因子JAK1（r=0.42， P <0.05）、STAT3（r=0.59， P <0.01）呈正相关，与通路下游因子C-myc（r=0.60， P <0.01）呈正相关。JAK1与通路因子STAT3（r=0.48， P <0.05）呈正相关。STAT3与通路下游因子C-myc（r=0.56， P <0.01）呈正相关。
2.4 RT-PCR检测结果 通路特异性受体IL-22R1的mRNA表达，血热证、血燥证均明显高于正常人，差异有统计学意义（ P <0.01）；血瘀证与正常人差异无统计学意义（ P >0.05）；3证型之间比较，血熱证明显高于血瘀证，差异有统计学意义（ P <0.01）；血燥证高于血瘀证，差异有统计学意义（ P <0.05）；通路因子JAK1的mRNA表达，血热证明显高于正常人，差异有统计学意义（ P <0.01）；血燥证高于正常人，差异有统计学意义（ P <0.05）；血瘀证与正常人，差异无统计学意义（ P >0.05）；3证型之间，差异无统计学意义（ P >0.05）。通路因子STAT3的mRNA表达，血热证、血燥证均明显高于正常人，差异有统计学意义（ P <0.01）；血瘀证高于正常人，差异有统计学意义（ P <0.05）；3证型之间比较，血热证高于血瘀证，差异有统计学意义（ P <0.05）。通路下游因子C-myc的mRNA表达，血热证明显高于正常人，差异有统计学意义（ P <0.01）；血瘀证、血燥证与正常人差异无统计学意义（ P >0.05）；3证型之间比较，血热证明显高于血瘀证，差异有统计学意义（ P <0.01）。见表1。
3 讨论
JAK/STAT是由膜至核的信号通路，激活本通路关键因子STAT3影响细胞的生长增殖[5]。STAT3的活化是通过SATA3分子酪氨酸残基的磷酸化而实现的，磷酸化的STAT3形成二聚体进入细胞核内，通过信号识别与下游靶基因启动子的特异性位点结合，调节相应基因的表达[6]。IL-22R1是IL-22特异性结合位点，在皮肤中主要表达于KC[7-8]。IL-22能通过活化银屑病患者KC中的STAT3信号传导通路，诱导其下游的细胞周期调控因子C-myc表达。C-myc是非常重要的细胞生长周期调控因子，能参与细胞的生长、分化过程，其表达高低对于细胞从分裂前（G1）期进入分裂（S）期极为重要。高水平的C-myc表达使细胞大量增殖，而分化受到抑制[9]。在银屑病患者体内，C-myc表达明显增多[4]，使KC大量增殖、分化抑制，进而出现表皮角化过度伴角化不全的病理改变。在本研究中，我们通过检测银屑病患者皮肤组织中IL-22R1、JAK1、STAT3、C-myc的mRNA表达水平的相关性发现，各因子之间均呈正先关，证明随着配体与通路特异性受体IL-22R1结合，JAK1/STAT3通路活化开放，下游因子C-myc的mRNA表达水平也同时上调。而C-myc表达增加主要改变KC增殖、凋于周期，使表皮增殖凋亡异常，出现表皮角化不全的表现。
“辨血为主，从血论治”是银屑病的基本辨证思路[10]，历代医家通过大量临床实践，总结出血热证、血燥证、血瘀证3大银屑病基本证型[11]。其中，血热证可以说是银屑病发生的核心环节，也是向血瘀、血燥证转变的枢机[12]。银屑病初起或复发加重时皮疹特点为皮疹鲜红、新疹出现或原疹扩大，这些都属于血热证的典型表现。血热证的形成是由于外感淫邪或内伤情志或饮食不节导致的血热毒盛，热毒壅于皮肤而发红斑、鳞屑；然热毒内盛，煎灼阴液，血行失畅，瘀阻脉络，肌肤失养，皮损肥厚、顽固难消，而成血瘀证；热毒蕴结日久，耗伤阴血，生风化燥，肌肤失养，皮损干燥皲裂、反复不愈，而呈血燥证[13]。本研究中，我们比较了血热证、血瘀证、血燥证银屑病患者皮损中IL-22R1、JAK1、STAT3、C-myc的mRNA表达，结果显示JAK1/STAT3信号通路相关因子 的表达呈现血热证>血燥证>血瘀证的特点，血瘀 证表达与正常人差异无统计学意义。而我们前期研究[14]发现JAK1/STAT3通路的启动因子IL-22在银屑患者外周血中的水平也呈现血热证>血燥证>血瘀证的趋势，这与我们皮损中通路相关因子的表达趋势一致。由此可见，在KC异常增殖的病理过程中，血热证银屑病患者的JAK1/STAT3信号通路异常活跃。而正是这种活跃的表达促使C-myc表达增加，使KC增殖凋亡异常，形成了血热证银屑病大量脱屑的临床表现。同时，JAK1/STAT3通路活化程度的差异，也可能与血热证向血瘀、血燥证转变的过程相关。
参考文献
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