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食源性致病菌O157:H7的生物检测研究

时间:2022-10-28 19:45:11 公文范文 来源:网友投稿

摘要:根据致病性大肠杆菌O157:H7的致病基因rfbE设计特异性引物扩增出致病性O157:H7特异性序列,然后分别用常规的琼脂糖电泳技术和Agilent 2100 Bioanalyzer对PCR产物进行检测,并比较两种检测方法的灵敏度、准确度和重复性。结果表明,Bioanalyzer的灵敏性较琼脂糖凝胶电泳法高;其能准确地确定片段的大小(误差率小于5%),可提供PCR目的片段的质量浓度和摩尔浓度。Bioanalyzer芯片分析系统结合PCR方法可对食源性大肠杆菌O157:H7进行特异、准确、稳定、灵敏的检测和鉴定,具有重要的推广价值。

关键词:大肠杆菌O157:H7;聚合酶链反应;安捷伦2100生物分析仪;琼脂糖凝胶电泳

中图分类号:TS207.4;S852.61+2 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2011)01-0177-03

Detection of Foodborne Escherichia coli O157:H7 Using Agilent 2100 Bioanalyzer

FENG Jian1,BAI Yan-hong1,WANG Yun-long2,JING Jian-zhou1

(1.College of Food and Biological Engineering, Zhengzhou University of Light Industry, Zhengzhou 450002, China;

2.Henan Bioengineering Technology Research Center, Zhengzhou450002, China)

Abstract: The foodborne Escherichia coli O157:H7 could be detected through both Agilent 2100 Bioanalyzer and agarose gel electrophoresis when the specific amplified sequence of the aim gene rfbE was obtained by PCR technology. In this paper, the sensitivity, accuracy, and repeatability of the two methods were compared. The Bioanalyzer method was as 10 times sensitive as the agrose gel electrophoresis method, and it could provide the accurate size, mass and molar concentration of the PCR product. These results showed that the Agilent 2100 Bioanalyzer method could be used for the detection of the foodborne E. coli O157:H7.

Key words: Escherichia coli O157:H7; PCR; Agilent 2100 Bioanalyzer; agarose gel electrophoresis

大肠杆菌O157∶H7是肠出血性大肠杆菌(EHEC)的一个主要血清型,牛、羊、猪等家畜是其主要宿主[1],人类由于食用被大肠杆菌O157∶H7污染的食品或水源而致病。自1983年美国Riley等[2]首次报道大肠杆菌O157∶H7可以引起出血性肠炎以来,相继在英国、加拿大、日本等国出现暴发性流行病例。1987年我国首次由权太叔等从出血性结肠炎患者粪便中分离到大肠杆菌O157∶H7,此后福建、浙江、广东、河北、宁夏等十几个省区陆续分离出该菌[3]。有研究表明,人感染10个活菌即可致病,导致患者出现剧烈腹痛,引起出血性结肠炎甚至溶血性尿毒综合征[4,5]。

获得快速、敏感、特异的检测方法对于临床诊断和疫情控制是非常必要的。目前,常见的大肠杆菌O157∶H7检验方法主要有常规生化分离鉴定法、免疫磁珠法、酶联免疫吸附法、乳胶凝集试验法、基因探针法、聚合酶链式反应法、微生物鉴定仪法等[6-8]。常规生化方法操作复杂、耗时较长;免疫学方法可对大量样品进行筛选,但容易出现假阳性;而聚合酶链式反应法在病原菌的分子检测中已成为一种常用方法,其中敏感性、特异性和可靠性是衡量PCR扩增效率的3个重要指标。本试验使用常规的琼脂糖电泳技术和Agilent 2100 Bioanalyzer芯片分析系统对食源性致病菌O157∶H7的PCR产物进行检测,比较两种检测方法的灵敏度、准确度和重复性,现将结果报告如下。

材料与方法

1.1主要材料与试剂

大肠杆菌Escherichia coli O157∶H7菌株86-24购于广东省微生物菌种保藏中心。

针对rfbO157序列(GenBankS83460)筛选以下引物序列[9],rfbEL:5′-GTTAGCGTTAGGTATATCGG

AAG-3′,rfbER:5′-CCACCTTCACCTGTAGTAATAG

TT-3′,由上海生工生物工程技术服务有限公司合成,目的片段长378bp。7500LabChip试剂盒由Agilent Technologies提供。

1.2主要仪器

Agilent 2100 Bioanalyzer仪器和软件购自Agilent Technologies,所有基于芯片的分离及分析过程均在Agilent 2100 Bioanalyzer上自动进行。它是通过微流体技术对样品进行分离,当给芯片加电压时,样品便在芯片上的微流道中进行毛细管电泳;在样品流动过程中,不同的DNA片段根据其大小被分离。Bioanalyzer可以通过模拟凝胶电泳图和峰值图来显示试验结果。

1.3方法

1.3.1PCR反应以各种标准菌株DNA作为模板进行特异性PCR。PCR反应条件为:94℃预变性5 min;94℃、40 s,63℃、30 s,72℃、1 min,30次循环;72℃延伸5 min。

1.3.2琼脂糖凝胶电泳分析取上述PCR产物6 μL进行1.5%琼脂糖凝胶电泳,电压100V,30 min,然后照相并分析相应长度的扩增条带。

1.3.3芯片检测和分析按照DNA 7500LabChip试剂盒所提供的说明进行:①25μL的染料加入到含400 μL凝胶的离心管中,充分混合均匀后4 000 r/min离心10 min;②9 μL的凝胶和染料混合液添加到适当的孔中;③通过一个1 mL注射器施加一定的压力使混合液进入微流道;再分别加9 μL的凝胶和染料混合液到其他两个胶孔中;④5 μL的Marker添加到每个样品孔以及Ladder孔;⑤在Ladder孔添加1 μL的分子量标准,在样品孔中分别添加1 μL的PCR样品;⑥把芯片放在特定的漩涡混合器上2 400 r/min,混合1 min;⑦迅速把芯片插入Bioanalyzer仪器进行自动检测分析。

2结果与分析

2.1PCR反应的特异性

分别以金黄色葡萄球菌、金黄色葡萄球菌亚Ⅰ型、金黄色葡萄球菌亚Ⅱ型、沙门氏菌、乙型沙门氏菌、甲型沙门氏菌、鼠伤寒沙门氏菌、单增李斯特菌、威尔氏李斯特菌、痢氏志贺氏菌、宋氏志贺氏菌、福氏志贺氏菌、假结核耶尔森氏菌、大肠杆菌、JM109、DH5ɑ、大肠埃希尔菌、O157的DNA为模板,以rfbEL和rfbER为引物进行PCR,电泳结果见图1。由图1可知,除了18号O157的DNA扩出明显条带外,其他的泳道均无扩增条带,表明该引物在PCR扩增中的特异性较强。

2.2Bioanalyzer与琼脂糖凝胶电泳法的灵敏度比较

由图2、图3可知,随着DNA浓度的降低,扩增条带的亮度在一定程度上也慢慢降低;在菌液浓度为102个/mL时,琼脂糖的条带已经非常模糊,而Bioanalyzer的条带虽然亮度减弱,但仍可以明显看出条带。另外,在图2中,1~6号泳道在点样量相同的情况下,由于DNA的迁移速率受到多种因素的影响(包括DNA浓度、电场强度、缓冲液及荧光染料的嵌入等),条带的迁移表现出一定的差异化。在图3中,1~6号的产物大小基本是一样的,这是因为生物分析仪芯片分析系统可以对样品片段大小和浓度进行校正,这样就减少了样品流经分离管道过程中所产生的轻微变异。由图2和图3的对比可见,利用Bioanalyzer可提高检测的灵敏度;同时,由于芯片检测系统有配套的试剂盒和标准化的操作方法,从而可以提高结果的重复性和准确度。

2.3Bioanalyzer与琼脂糖凝胶电泳法对片段大小测定准确度和重复性的比较

由图1、图2可知,目的片段处于300~400bp之间,但具体的大小无法确定,而通过Agilent检测的数据(表1)可以看出Bioanalyzer不仅能够给出正确的片段大小(误差率小于5%),而且可以同时给出该产物的质量浓度和摩尔浓度。由表1可知,随着样品中加入的菌体DNA浓度的降低,PCR扩增所得的目的产物的质量浓度和摩尔浓度也在降低,这与前面对菌体浓度的稀释是相呼应的,而在琼脂糖凝胶电泳图中却只能做定性的分析。

3讨论

由于食源性致病菌潜在的致病性和在临床样品中菌量比较少,检测系统的灵敏度就显得尤为重要。Bioanalyzer的灵敏度决定于它所检测的菌体浓度。有研究表明,输入的目的片段浓度在10~65 ng/μL范围内,Bioanalyzer检测的结果是一样的[10]。

Bioanalyzer一次可以分析12个样品,且从检测开始到结束只需2~3 h,Bioanalyzer在灵敏度、准确度、重复性上表现出较好的结果。传统的琼脂糖电泳分析需要一个专门放置仪器的空间、电子成像系统以及在制备胶的过程中要接触到一些有毒物质,最后产生一些难以利用的废弃物。

但是Bioanalyzer在分析DNA片段大小差别在8~12bp方面还存在一定的困难,这导致它不能够分析片段大小非常相近的DNA片段[11];这也提示我们,在后续多重PCR的研究中各个目的片段大小的差异应大于12bp。除此之外,Bioanalyzer可以给出所有琼脂糖电泳所能检测的DNA片段的准确大小,误差率小于5%。

今后,在快速检测肠出血性大肠杆菌O157:H7方面,PCR结合Agilent Bioanalyzer将会成为检测手段中的一种非常有用的工具。

参考文献:

[1] 林鹭芳,黄健利,钟凌. 漳州市首次检出O157:H7大肠杆菌[J]. 海峡预防医学杂志,2002,8(4):52.

[2] RILEY L W, REMIS R S, HELGERSON S D, et al. Hemorrhagiccolitis associated with a rare Escherichia coli serotype[J]. N Engl J Med, 1983, 308:681-685.

[3] 丁红雷,毛旭虎. 肠出血性大肠杆菌O157:H7的分子生物学检测方法研究进展[J]. 国外医学临床生物化学与检验学分册,2005,26(8):523-525.

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[7] 张洁梅. 食品微生物检验技术的研究进展[J]. 现代食品科技,2005,21(2):221-222.

[8] 宋宏新,李宏. 肠出血性大肠杆菌O157:H7的检测方法进展[J]. 食品科学,2007,28(11):607-610.

[9] 李波,乔凤. 应用PCR方法检测食品中LM与EHEC O157:H7[D]. 北京:北京吉利大学,2006.

[10] BRENA R M, AUER H, KORNACKER K, et al. Accurate quantification of DNA methylation using combined bisulfite restriction analysis coupled with the Agilent 2100 Bioanalyzer platform[J]. Nucleic Acids Research, 2006, 34(3):e17.

[11] LIRVING N, NICHOLAS J P,LI M, et al. Agilent 2100 Bioanalyzer for restriction fragment length polymorphism analysis of the Campylobacter jejuni flagellin gene[J]. JClin Microbiol, 2001, 39(2):754-757.

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